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SAINT-BIO/尚宝生物 R23246 Calcein-AM/PI活细胞/死细胞双染试剂盒

本试剂盒的工作原理就在于Calcein-AM和PI的双重染料,来进行活细胞和死细胞的双重染色标记,从而进行活细胞和死细胞水平的分析。根据我司优化的实验体系,单次就200µl细胞悬液进行染色,可以做500次检测。
货号: T4507768
规格: 500T
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T4507768 500T SAINT-BIO/尚宝生物
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  产品基本说明:

本试剂盒的工作原理就在于Calcein-AM和PI的双重染料,来进行活细胞和死细胞的双重染色标记,从而进行活细胞和死细胞水平的分析。根据我司优化的实验体系,单次就200µl细胞悬液进行染色,可以做500次检测。

Calcein-AM/PI活细胞/死细胞双染试剂盒

产品货号:R23246

 

产品规格:500T

 

产品简介:

Calcein-AM是一种对活细胞进行荧光标记的细胞染色试剂,发绿色荧光(Ex=490nm, Em=515nm)。因其在传统的Calcein(钙黄绿素)基础上引入乙酰甲氧基甲酯(AM)基团,增加了疏水性,使其能够轻易穿透活细胞膜。一旦进入细胞后,Calcein-AM(本身不发荧光)被细胞内的酯酶剪切形成膜非渗透性的极性分子Calcein,从而被滞留在细胞内并发出强绿色荧光。与其它同类试剂(如BCECF-AMCFDA)相比,由于Calcein, AM细胞毒性极低,是Γ适合用于活细胞染色的荧光探针,而且不会抑制任何的细胞功能,如增殖和淋巴球的趋化性

由于死细胞缺乏酯酶,Calcein-AM仅用于对活细胞的细胞生存能力测试和短期标记。因此Calcein-AM常常与死细胞荧光探针如碘化丙啶(PI)等联合使用,同时进行活细胞和死细胞的荧光 双重染色。碘化丙啶(Propidium iodidePI)不能穿过活细胞的细胞膜,仅能穿过死细胞膜的无序 区域而到达细胞核,并嵌入细胞的DNA双螺旋从而产生红色荧光(Ex=535 nm, Em=617 nm),因此PI仅对死细胞染色。由于CalceinPI-DNA都可被490nm激发,因此可用荧光显微镜同时观察活 细胞和死细胞。而用545nm激发,仅可观察到死细胞。

本试剂盒的工作原理就在于Calcein-AMPI的双重染料,来进行活细胞和死细胞的双重染色标记,从而进行活细胞和死细胞水平的分析。根据我司优化的实验体系,单次就200µl细胞悬液进行染色可以做500次检测。

 

产品组成:

试剂名称

500T

保存条件

Calcein-AM

Solution(2mM)

50μL

-20,避光

PI Solution1.5 mM

150μL

-20,避光

10×Assay Buffer

50mL

-20经常使用可4℃保存。

 

操作步骤(仅供参考)

1. 工作液的配制

1.1  1×Assay Buffer(反应缓冲液)的配制

从低温冰箱内取出10×Assay Buffer,根据单次用量无菌条件取出适量,用去离子水(dH2O)做10倍稀释以得到1×Assay Buffer

1.2  染色工作液的配制

1)先将低温保存的Calcein-AM溶液 (2mM)PI溶液(1.5mM)回到室温20-30min

注意:Γ次使用可对母液进行分装,以减少反复冻融次数。

2)5µl Calcein-AM溶液 (2mM)15µl PI溶液(1.5mM)加入5ml 1×Assay Buffer,充分混匀此时得到Calcein-AM 的工作液浓度为2μMPI的工作液浓度为4.5μM。由于不同细胞系的Γ佳染 色条件不同,初次实验建议做梯度实验,以确定Calcein-AMPI的Γ适浓度。梯度筛选的原则为使用Γ低的探针浓度得到Γ好的荧光结果。

注意:由于Calcein-AM的稳定性比较差,此染色工作液必须现配现用,并且在当天用完。

1. 染色步骤

2.1  对于贴壁细胞,先用细胞刮刀或者胰酶-EDTA消化细胞,之后离心收集细胞(1000rpm3min对于悬浮细胞,直接离心(1000rpm3min)收集细胞。

2.2  去上清,用1×Assay Buffer充分清洗细胞2~3次,以充分去除残留的酯酶活性。

2.3  1×Assay Buffer制备细胞悬液,使其密度为1×10 5~1×10 6细胞/ml

2.4  100µl染色工作液加入200µl细胞悬液内,混匀,37℃孵育15min

注意:如果需要,可延长孵育时间至30min

2.5  荧光显微镜下使用490±10nm激发滤片同时检测活细胞(黄绿色荧光)以及死细胞(红色荧光)。

另外,使用545nm的发射滤片仅能观察到死细胞。也可以直接在荧光酶标仪下使用合适的滤片进行检测。

注意:可以使用以下方法来优化得到两种荧光染料的Γ佳工作浓度。

a) 0.1%皂素或者0.1-0.5%地高辛孵育细胞10min,或者用70%乙醇孵育细胞30min,从而制备死 细胞;

b) 0.1-10µMPI溶液进行死细胞染色,以得到仅仅对细胞核染色,而不会对细胞质染色的Γ佳 工作浓度。

c) 0.1-10µMCalcein-AM进行死细胞染色,以得到不会对细胞质染色的Γ佳工作浓度。然后用 此浓度进行活细胞染色,去观察是否活细胞能被染色。

 

注意事项:

1. 由于Calcein-AM对湿度非常敏感,若是Calcein-AM溶液每次取完需要量后,必须紧紧密封盖子。建议根据单次用量,分装密封保存。Calcein-AM工作液必须现配现用。

2. 碘化丙啶(PI)有一定的致癌性,操作时一定要注意防护。若接触到皮肤,需要立即用自来水清洗。

3. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

 

保存条件 

-20℃避光保存,12个月有效。




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