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产品基本说明:
试剂盒采用磁珠法来提取小鼠不同组织的基因组DNA,磁珠与DNA的特异性结合使得提取的DNA纯度高、 浓度大,而且操作时间短,不需要使用其他仪器。使用本试剂盒提取的基因组DNA可适用于各种常规的分子生物学实验,包括酶切、PCR、测序、连接和转化等试验。本试剂盒无需使用苯、氯仿等有毒试剂,操作安全。 |
动物组织基因组DNA提取试剂盒(磁珠法)
产品货号:BA1990
产品规格:50T/100T
产品介绍:
试剂盒采用磁珠法来提取小鼠不同组织的基因组DNA,磁珠与DNA的特异性结合使得提取的DNA纯度高、 浓度大,而且操作时间短,不需要使用其他仪器。使用本试剂盒提取的基因组DNA可适用于各种常规的分子生物学实验,包括酶切、PCR、测序、连接和转化等试验。本试剂盒无需使用苯、氯仿等有毒试剂,操作安全。
产品组成:
试剂盒组成 | 50T | 100T | 保存条件 |
RNase A | 1mL | 1mL×2 | -20℃ |
蛋白酶 K | 1mL | 1mL×2 | -20℃ |
溶液 A | 15mL | 30mL | 室温 |
漂洗液 | 25mL | 25mL×2 | 室温 |
洗脱液 | 10mL | 20mL | 室温 |
磁珠 | 750μL | 1.5mL | 2-8℃,切勿冷冻 |
注意:使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签。
实验步骤(仅供参考):
1. 称取小鼠组织23-26mg放于1.5mL离心管中,在离心管中加入200μL溶液A,然后用研磨杵将组织研磨完全。
2. 向离心管中加入20μL的蛋白酶K溶液(20mg/mL),充分震荡混匀,65℃放置1-3h,取出后向离心管中加入20μL RNase A(10mg/ mL),吹吸混匀后室温放置20min。
3. 向离心管中加入220μL无水乙醇和15μL羟基磁珠(磁珠使用前需涡旋震荡混匀),涡旋震荡混匀后室温放置10min,每隔2-3min颠倒混匀一次。
4. 将离心管放于磁力架上吸附5min,待磁珠聚集后将液体吸出。
5. 向离心管中加入600μL漂洗液(使用前请确认是否已加入无水乙醇),涡旋震荡混匀后放于立即磁力架上吸附,待磁珠聚集液体澄清后将液体吸出。
6. 重复操作步骤5两次。
7. 将离心管置于磁力架上开盖放置5min,以除去多余的乙醇,静置期间如果离心管底部有多余的液体,用移液枪将其吸出。
8. 将离心管从磁力架上取下,置于普通离心管架上,向离心管中加入100-200μL洗脱液,用移液枪将磁珠与洗脱液吹吸混匀,65℃放置5min,之后放于磁力架上吸附,待磁珠聚集液体澄清后将液体吸到干净的离心管中(若吸取的液体出现浑浊,可以进行离心),该液体即为提取的基因组DNA,提取的DNA产物应保存在-20℃。
注意事项:
1. 磁珠置于2-8℃冰箱保存。冷冻,干燥和离心等操作会引起磁珠团聚,不易于重悬和分散,并影响磁珠表面功能基团的化学活性。
2. 尽量使用新鲜的小鼠组织进行基因组DNA的提取。
3. 在提取小鼠脾的基因组DNA时,加入洗脱液温浴后会变粘稠,可适当增加(如再向离心管中加入100μL的洗脱液)洗脱液的体积进行离心。
4. 洗脱液的体积不应少于100μL,体积过少会影响提取效率,而且洗脱液的pH值也会影响洗脱效率,如果需要用水洗脱,应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围),pH值低于7.0会降低洗脱效率;DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。
5. DNA浓度及纯度检测:提取的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度,DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。OD260/OD280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。
保存:2-8℃(注:RNase A和蛋白酶K以附件形式,低温运输,到货后-20℃保存。)
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